慶應義塾研究者情報データベース

プロフィール 【 表示 ／ 非表示 】

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• 2007年東京大学医学部卒業。臨床研修を経て、2009-2013年 東京大学大学院医学系研究科・内科学専攻博士課程、博士(医学)取得。2013-2014年 東京大学医学部附属病院血液・腫瘍内科助教を経て、2014-2018年にPrincess Margaret Cancer Centre (カナダ・トロント)において、リサーチ・フェローとしてがん免疫療法の基礎研究に従事。2018-2019年 東京大学医学部附属病院無菌治療部講師。2019年10月より愛知県がんセンター研究所 腫瘍免疫応答研究分野・分野長として研究室を主宰。2020年4月より名古屋大学大学院医学系研究科がん先端診断・治療開発学講座 細胞腫瘍学分野連携教授 (兼任)。2023年1月より現職。

経歴 【 表示 ／ 非表示 】

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• 2007年04月

  -

  2009年03月

  関東労災病院, 内科

• 2013年04月

  -

  2013年09月

  東京大学, 医学部附属病院 血液・腫瘍内科, 特任研究員

• 2013年10月

  -

  2014年05月

  東京大学, 医学部附属病院 血液・腫瘍内科, 助教

• 2014年06月

  -

  2018年05月

  プリンセス・マーガレットがんセンター, Tumor Immunotherapy Program, Research Fellow

• 2018年06月

  -

  2019年09月

  東京大学, 医学部附属病院, 講師

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学歴 【 表示 ／ 非表示 】

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• 2001年04月

  -

  2007年03月

  東京大学, 医学部, 医学科

• 2009年04月

  -

  2013年03月

  東京大学, 大学院医学系研究科

学位 【 表示 ／ 非表示 】

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• 博士(医学), 東京大学, 課程, 2013年03月

研究分野 【 表示 ／ 非表示 】

研究分野 【 表示 ／ 非表示 】

• ライフサイエンス / 免疫学 （腫瘍免疫、がん免疫療法、細胞療法、分子細胞生物学、血液・腫瘍内科学）

論文 【 表示 ／ 非表示 】

論文 【 表示 ／ 非表示 】

• Gene editing technology to improve antitumor T-cell functions in adoptive immunotherapy

  Ito Y., Inoue S., Kagoya Y.

  Inflammation and Regeneration （Inflammation and Regeneration）  44 （ 1 ）  2024年12月

  最終著者, 責任著者, 査読有り

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  Adoptive immunotherapy, in which tumor-reactive T cells are prepared in vitro for adoptive transfer to the patient, can induce an objective clinical response in specific types of cancer. In particular, chimeric antigen receptor (CAR)-redirected T-cell therapy has shown robust responses in hematologic malignancies. However, its efficacy against most of the other tumors is still insufficient, which remains an unmet medical need. Accumulating evidence suggests that modifying specific genes can enhance antitumor T-cell properties. Epigenetic factors have been particularly implicated in the remodeling of T-cell functions, including changes to dysfunctional states such as terminal differentiation and exhaustion. Genetic ablation of key epigenetic molecules prevents the dysfunctional reprogramming of T cells and preserves their functional properties. Clustered, regularly interspaced, short palindromic repeats (CRISPR)/CRISPR-associated protein (Cas)-based gene editing is a valuable tool to enable efficient and specific gene editing in cultured T cells. A number of studies have already identified promising targets to improve the therapeutic efficacy of CAR-T cells using genome-wide or focused CRISPR screening. In this review, we will present recent representative findings on molecular insights into T-cell dysfunction and how genetic modification contributes to overcoming it. We will also discuss several technical advances to achieve efficient gene modification using the CRISPR and other novel platforms.

  • Access to Document (DOI)

• Cytokine signaling in chimeric antigen receptor T-cell therapy

  Kagoya Y.

  International Immunology （International Immunology）  36 （ 2 ） 49 - 56 2024年02月

  筆頭著者, 最終著者, 責任著者, 査読有り,  ISSN  09538178

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  Adoptive immunotherapy using chimeric antigen-receptor (CAR)-engineered T cells can induce robust antitumor responses against hematologic malignancies. However, its efficacy is not durable in the majority of the patients, warranting further improvement of T-cell functions. Cytokine signaling is one of the key cascades regulating T-cell survival and effector functions. In addition to cytokines that use the common γchain as a receptor subunit, multiple cytokines regulate T-cell functions directly or indirectly. Modulating cytokine signaling in CAR-T cells by genetic engineering is one promising strategy to augment their therapeutic efficacy. These strategies include ectopic expression of cytokines, cytokine receptors, and synthetic molecules that mimic endogenous cytokine signaling. Alternatively, autocrine IL-2 signaling can be augmented through reprogramming of CAR-T cell properties through transcriptional and epigenetic modification. On the other hand, cytokine production by CAR-T cells triggers systemic inflammatory responses, which mainly manifest as adverse events such as cytokine-release syndrome (CRS) and neurotoxicity. In addition to inhibiting direct inflammatory mediators such as IL-6 and IL-1 released from activated macrophages, suppression of T-cell-derived cytokines associated with the priming of macrophages can be accomplished through genetic modification of CAR-T cells. In this review, I will outline recently developed synthetic biology approaches to exploit cytokine signaling to enhance CAR-T cell functions. I will also discuss therapeutic target molecules to prevent or alleviate CAR-T cell-related toxicities.

  • Access to Document (DOI)

• Introduction: Synthetic Biology for Cancer Immunology Special Issue

  Kagoya Y.

  International Immunology （International Immunology）  36 （ 2 ） 45 - 48 2024年02月

  最終著者, 責任著者, 査読有り,  ISSN  09538178

  • Access to Document (DOI)

• AKT2 inhibition accelerates the acquisition of phagocytic ability in induced pluripotent stem cell–derived neutrophils

  Hino T., Nakahara F., Miyauchi M., Ito Y., Masamoto Y., Morita K., Kagoya Y., Kojima H., Kurokawa M.

  Experimental Hematology （Experimental Hematology）  130 2024年02月

  最終著者, 責任著者, 査読有り,  ISSN  0301472X

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  Neutrophils are key components of the immune system that inhibit bacterial infections. Systemic bacterial infections can cause lethal conditions, especially in patients with neutropenia associated with chemotherapy or other systemic illnesses; hence, early detection of the symptoms and prompt management are crucial in such cases. Previously, we established expandable engineered neutrophil-primed progenitors (NeuPs-XL) using human-induced pluripotent stem cells (iPSCs), which can produce neutrophil-like cells at a clinically suitable scale within 4 days of inducing myeloid differentiation. In this study, using small-molecule compound-based screening, we detected that MK-2206, a selective pan-AKT inhibitor, can accelerate this differentiation process, promote phagocytic ability in neutrophils, and enhance cytokine and chemokine expression in response to lipopolysaccharides. The inhibition of AKT2has been identified as the key mechanism underlying this acceleration. These results can make a substantial contribution to the development of strategies for the prompt production of clinically applicable iPSC-derived neutrophils, which can potentially lead to the management of severe infections associated with life-threatening neutropenia and the effective treatment of related health conditions in the future.

  • Access to Document (DOI)

• Epigenetic profiles guide improved CRISPR/Cas9-mediated gene knockout in human T cells

  Ito Y., Inoue S., Nakashima T., Zhang H., Li Y., Kasuya H., Matsukawa T., Wu Z., Yoshikawa T., Kataoka M., Ishikawa T., Kagoya Y.

  Nucleic Acids Research （Nucleic Acids Research）  52 （ 1 ） 141 - 153 2024年01月

  最終著者, 責任著者, 査読有り,  ISSN  0305-1048

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  Genetic modification of specific genes is emerging as a useful tool to enhance the functions of antitumor T cells in adoptive immunotherapy. Current advances in CRISPR/Cas9 technology enable gene knockout during in vitro preparation of infused T-cell products through transient transfection of a Cas9-guide RNA (gRNA) ribonucleoprotein complex. However, selecting optimal gRNAs remains a major challenge for efficient gene ablation. Although multiple in silico tools to predict the targeting efficiency have been developed, their performance has not been validated in cultured human T cells. Here, we explored a strategy to select optimal gRNAs using our pooled data on CRISPR/Cas9-mediated gene knockout in human T cells. The currently available prediction tools alone were insufficient to accurately predict the indel percentage in T cells. We used data on the epigenetic profiles of cultured T cells obtained from transposase-accessible chromatin with high-throughput sequencing (ATAC-seq). Combining the epigenetic information with sequence-based prediction tools significantly improved the gene-editing efficiency. We further demonstrate that epigenetically closed regions can be targeted by designing two gRNAs in adjacent regions. Finally, we demonstrate that the gene-editing efficiency of unstimulated T cells can be enhanced through pretreatment with IL-7. These findings enable more efficient gene editing in human T cells.

  • Access to Document (DOI)

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総説・解説等 【 表示 ／ 非表示 】

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• 血液がんを標的としたCAR-T細胞療法の現状と課題

  籠谷 勇紀

  炎症と免疫（先端医学社） 31 （ 4 ） 283 - 288 2023年07月

• 多発性骨髄腫に対するCAR-T細胞療法の研究開発動向

  籠谷 勇紀

  血液内科（科学評論社） 86 （ 5 ） 676 - 681 2023年05月

• キメラ抗原受容体遺伝子改変T細胞療法の改良

  籠谷 勇紀

  腫瘍内科（科学評論社） 31 （ 4 ） 462 - 467 2023年04月

• Introduction: Redefining T-cell Exhaustion Special Issue

  Kagoya Y., Togashi Y.

  International Immunology （International Immunology）  34 （ 11 ） 545 - 546 2022年11月

  ISSN  09538178

  • Access to Document (DOI)

• Epigenetic engineering for optimal chimeric antigen receptor T cell therapy

  Yusuke Ito, Yuki Kagoya

  Cancer Science 113 （ 11 ） 3664 - 3671 2022年11月

  責任著者

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  Recent advancements in cancer immunotherapy, such as chimeric antigen receptor (CAR)-engineered T cell therapy and immune checkpoint therapy, have significantly improved the clinical outcomes of patients with several types of cancer. To broaden its applicability further and induce durable therapeutic efficacy, it is imperative to understand how antitumor T cells elicit cytotoxic functions, survive as memory T cells, or are impaired in their effector functions (exhausted) at the molecular level. T cell properties are regulated by their gene expression profiles, which are further controlled by epigenetic architectures, such as DNA methylation and histone modifications. Multiple studies have elucidated specific epigenetic genes associated with T-cell phenotypic changes. Conversely, exogenous modification of these key epigenetic factors can significantly alter T cell functions by extensively altering the transcription network, which can be applied in cancer immunotherapy by improving T cell persistence or augmenting effector functions. As CAR-T cell therapy involves a genetic engineering step during the preparation of the infusion products, it would be a feasible strategy to additionally modulate specific epigenetic genes in CAR-T cells to improve their quality. Here, we review recent studies investigating how individual epigenetic factors play a crucial role in T-cell biology. We further discuss future directions to integrate these findings for optimal cancer immunotherapy.

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研究発表 【 表示 ／ 非表示 】

研究発表 【 表示 ／ 非表示 】

• 合成生物学的アプローチによる がん免疫療法の進化

  籠谷 勇紀

  千里ライフサイエンスセミナーV3, 

  2023年09月

  , 

  口頭発表（招待・特別）

• 次世代型CAR-T細胞療法の開発

  籠谷 勇紀

  第6回バイオ医薬EXPO, 

  2022年07月

  , 

  口頭発表（招待・特別）

• CAR-T 細胞療法の適用拡大に向けた研究開発

  籠谷 勇紀

  第7回日本がんサポーティブケア学会学術集会, 

  2022年06月

  , 

  口頭発表（招待・特別）

• エピジェネティクス改変による長期生存型CAR-T細胞の製造

  籠谷 勇紀

  第14回日本血液疾患免疫療法学会, 

  2022年06月

  , 

  口頭発表（招待・特別）

• エピジェネティクス修飾によるCAR-T細胞の改良

  籠谷 勇紀

  第3回東京理科大学総合研究院合成生物学研究部門シンポジウム, 

  2022年03月

  , 

  口頭発表（招待・特別）

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競争的研究費の研究課題 【 表示 ／ 非表示 】

競争的研究費の研究課題 【 表示 ／ 非表示 】

• エピゲノム改変によるT細胞のメモリー機能とエフェクター機能の両立

  2024年06月

  -

  2026年03月

  籠谷 勇紀, 挑戦的研究（萌芽）, 補助金,  研究代表者

• 遺伝子改変による長期生存型CAR-NK細胞療法の開発

  2023年04月

  -

  2026年03月

  日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 籠谷 勇紀, 基盤研究(B), 補助金,  研究代表者

• 肺癌における腫瘍抗原の違いによるT細胞の運命決定と術後再発予防効果に関する検討

  2022年04月

  -

  2025年03月

  日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 松下 博和, 黒田 浩章, 籠谷 勇紀, 真砂 勝泰, 山口 類, 基盤研究(B), 未設定

• 抗体医薬と免疫細胞療法の融合による有効ながん治療システムの開発

  2021年07月

  -

  2023年03月

  日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 籠谷 勇紀, 挑戦的研究(萌芽), 未設定

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  キメラ抗原受容体（CAR）導入T細胞は抗原特異的で高い細胞傷害効果を有するが、がん組織内における疲弊誘導などでそのエフェクター効果が減弱すること、及びがん細胞側の標的抗原の喪失などによる免疫逃避機構が働くことが問題である。
  本研究ではCARを通じたエフェクター効果のみならず、CAR-T細胞から、例えば二重特異性抗体などの抗体医薬品を遺伝子レベルで製造・分泌させることで、さらに細胞傷害効果を高めることを目指している。今年度は特定の標的抗原に注目して、分泌に用いる抗体の遺伝子配列について、主にシグナルペプチド、リンカー配列の検討を行った。標的抗原を発現するがん細胞株との共培養の実験系で、がん細胞に対する細胞傷害効果の誘導、培養上清中への薬剤の分泌濃度などの観点から、適した配列を決定した。同分子は抗原を発現しない細胞には作用せず、抗原特異性が付与されていることを確認した。また次年度以降に用いるマウス腫瘍モデルの確立を行った。免疫不全マウス（NSGマウス）に腫瘍細胞株を投与した上で、ヒトCAR-T細胞を輸注する実験系で、腫瘍の増生を抑制できることを確認した。さらに腫瘍量やCART細胞の投与量を調整してCART細胞のみでは腫瘍増生を制御できないプロトコールを設定した。
  次年度以降は複数の標的抗原を検討しながら、in vivoにおけるマウス腫瘍モデルで本治療システムが通常のCAR-T細胞と比較して優れた抗腫瘍効果を誘導できることを示す。同時に他臓器に対する毒性などを検証することで、特異性（安全性）の確認を行う。

• 遺伝子修飾による抗腫瘍T細胞の長期生存化と養子免疫療法への応用

  2020年04月

  -

  2023年03月

  日本学術振興会, 科学研究費助成事業, 籠谷 勇紀, 基盤研究(B), 未設定

  　研究概要を見る

  本研究では、抗腫瘍T細胞の長期生存能を高めるために、T細胞性リンパ腫細胞で変異が報告されている遺伝子群に着目して抗腫瘍T細胞に遺伝子導入を行い、その機能解析、具体的には細胞増殖能、サイトカイン分泌、細胞傷害活性などの評価を通じて、持続的な抗腫瘍効果の改善に寄与する遺伝子修飾標的を同定することを目標としている。
  本年度は、これまでの探索から同定していたがん抑制遺伝子PRDM1のノックアウトによるキメラ抗原受容体(CAR)-T細胞、及び腫瘍浸潤T細胞 (TIL)の機能改善について、さらに解析を進めた。PRDM1をCRISPR/Cas9技術を用いて遺伝子レベルでノックアウトしたCAR-T細胞は、コントロールと比較して生体内における長期生存能に優れ、その結果として有意に治療効果を改善させることを、異なる標的抗原を標的とした複数のマウス腫瘍モデルにおいて示した。特に現在のところ有効な治療効果が得られていない固形がんに対するCAR-T細胞においても、同様に長期生存能の獲得が見られることを示した。その際に、生体内に残存するPRDM1ノックアウトCAR-T細胞が未分化メモリー形質を有意に維持していることも確認した。またTILについては、主に肺癌、婦人科腫瘍検体から採取した検体について、PRDM1ノックアウトの効果を検証した。いずれの検体でも末梢血T細胞と比較して終末分化がより進行していたが、PRDM1ノックアウトにより、一部のメモリー形質の再獲得が起こり、サイトカイン分泌能が改善することを確認した。これらの研究成果は学術論文として受理された (Yoshikawa et al. Blood 2022)。

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担当授業科目 【 表示 ／ 非表示 】

担当授業科目 【 表示 ／ 非表示 】

• 基礎臨床統合医学

  2024年度

• 免疫学

  2024年度

• 症例検討

  2024年度

• 先端医科学演習

  2024年度

• 先端医科学実習

  2024年度

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